PD Dr. habil. Carsten H.G. Müller

Wissenschaftlicher Mitarbeiter

Zoologisches Institut und Museum
Allgemeine und Systematische Zoologie

Loitzer Str. 26
17489 Greifswald

Tel.: +49 (0)3834 420-4240
Fax: +49 (0)3834 420-4098
carstmue(at)uni-greifswald(dot)de
camueller2(at)freenet(dot)de

Forschungsinteressen

Mein Hauptarbeitsgebiet ist die Vergleichende Ultrastruktur von Sinnes- und Drüsenorganen, sowie Zentrale und Periphere Nervensysteme bei diversen Invertebraten, darunter Anneliden, Chaetognathen, Brachiopoden und vor allem Arthropoden. Dabei interessieren mich nicht nur der feinstrukturelle Aufbau, sondern auch die Funktionsmorphologie und die Evolution der untersuchten Organe bzw. Organsysteme. Ich arbeite multimodalmikroskopisch, mit einem Schwerpunkt auf der Transmissionselektronenmikroskopie (TEM).

Derzeit interessiere ich mich besonders für die Disparität und Evolution von Sinnes- und Drüsenorganen, die mit der Reproduktion und dem Beuteerwerb in Verbindung stehen. Untersuchungsobjekte sind diverse Hundertfüßer (Chilopoda) und Spinnen (Araneae).


Curriculum Vitae
Schulbesuch
06/1992Abitur
1983-1992Stadtgymnasium Dortmund
1979-1983Kirchhörder Grundschule in Dortmund
Hochschulausbildung
07/2015Venia legendi für das Fachgebiet Zoologie (Ernst-Moritz-Arndt-Universität Greifswald)
10/2008-12/2014Kumulative Habilitation am Zoologischen Institut und Museum der Ernst-Moritz-Arndt-Universität Greifswald
11/2001-12/2007Kumulative Promotion am Institut für Biowissenschaften (Lehrstuhl für Allgemeine & Spezielle Zoologie) der Universität Rostock
11/1996-04/2001Hauptstudium der Biologie an der Universität Rostock mit den Schwerpunkten Zoologie, Meeresbiologie, Tierphysiologie, Umwelt- und Ökotoxikologie
11/1992-08/1996Grundstudium der Biologie an der Martin-Luther Universität Halle-Wittenberg
10/1992-11/1992Studium der Geographie an der Ruhr-Universität Bochum
Akademischer Werdegang
seit 04/2015Wissenschaftlicher Mitarbeiter am Zoologischen Institut und Museum der Ernst-Moritz-Arndt-Universität Greifswald (AG Allgemeine & Systematische Zoologie, Lehrstuhl Prof. Dr. Gabriele Uhl)
04/2014-03/2015Research Associate im Dept. of Neuroscience (University of Arizona, U.S.A.), Postdoc-Studien am Hundertfüßer-Gehirn im Rahmen des Air-Force-Projekts (PI: Prof. Dr. Nicholas J. Strausfeld, University of Arizona, Tucson, U.S.A.) ”Neuronal connections underlying low-level motion processing by Scutigeromorpha (Chilopoda)”
10/2008-12/2014Habilitationsschrift: „Multimodalmikroskopische Untersuchungen an Sinnes- und Drüsenorganen sowie an Nervensystem von ausgewählten Wirbellosen Tieren unsicherer phylogenetischer Zuordnung“
10/2008-11/2013Wissenschaftlicher Mitarbeiter am Zoologischen Institut und Museum der Ernst-Moritz-Arndt-Universität Greifswald (AG Cytologie & Evolutionsbiologie, Lehrstuhl Prof. Dr. Steffen Harzsch)
5/2007-4/2008Wissenschaftlicher Mitarbeiter im DFG-Projekt, Titel (PI: Prof. Dr. Stefan Richter, Universität Rostock): „Development of the circulatory system in Crustacea“
1/2006-9/2008Wissenschaftlicher Mitarbeiter im DFG-Schwerpunktprogramm „Metazoan Deep Phylogeny“ (SPP 1174); Titel des Teilprojekts (PI: Prof. Dr. Steffen Harzsch, damals MPI f. Chemische Ökologie, Jena): „Neurophylogeny: architecture and development of the nervous system, individually identifiable neurons and the phylogenetic position of the Chaetognatha”
5/2005-3/2007Wissenschaftlicher Mitarbeiter (Bat 2A) am Lehrstuhl für Allgemeine und Spezielle Zoologie (Fachbereich Biowissenschaften der Universität Rostock)
11/2001-12/2007Promotionsarbeit: Wissenschaftlicher Mitarbeiter (u.a. als Landesgraduiertenstipendiat: 11/2001-4/2005) am Institut für Biodiversitätsforschung der Universität Rostock (Lehrstuhl: Prof. Dr. Ragnar Kinzelbach); Titel: „Vergleichende Untersuchungen an Augen ausgewählter Hundertfüßer (Mandibulata: Chilopoda) und zur Bedeutung von Augenmerkmalen für die phylogenetische Rekonstruktion der Euarthropoda“ abgeschlossen mit summa cum laude
4/2000-4/2001Diplomarbeit; Titel: „Vergleichend-morphologische Untersuchungen am Komplexauge einiger Einsiedlerkrebse (Crustacea: Paguroidea) und Veränderungen der Ultrastruktur der Ommatidien im Hell-Dunkel-Rhythmus“ am Institut für Biowissenschaften der Universität Rostock
Stipendien und Preise
7/2017Kongressstipendium des DAAD (für aktive Teilnahme am 17th International Congress of Myriapodology, Thailand)
2/2016Kooperativer DFG-Sachmittelprojekt zur Vergleichenden Morphologie, Funktion und Evolution von Terminalbeinen ausgewählter Chilopoden (3 Jahre, eingeworben mit Dr. A. Sombke, Greifswald)
2/2012 Kooperativer DFG-Großgeräteantrag µ- und nano-CT (Nr. INST 292/119-1 FUG G) 2/2012 Kooperativer DFG-Großgeräteantrag µ- und nano-CT (Nr. INST 292/119-1 FUG G) 2/2012 Kooperativer DFG-Großgeräteantrag µ- und nano-CT (Nr. INST 292/119-1 FUG G)
6/2011Kongressstipendium des DAAD (für aktive Teilnahme am 2nd ICIM, Harvard (Cambridge), U.S.A.)
6/2010Kongressstipendium des DAAD (für aktive Teilnahme am 7th ICC, Qingdao, China)
2002-2005Landesgraduiertenstipendium des Landes Mecklenburg-Vorpommern, 3 Jahre Förderung
9/20021. Posterpreis beim 8th Colloquium Crustacea Decapoda Mediterranea (Corfu, Griechenland, 02.-07.09.2002)
Forschungsaufenthalte im Ausland
04/2014-03/2015ssTEM-Untersuchungen am visuellen Neuropil von Scutigera coleoptrata (Chilopoda), Air-Force Grant (Labor von Prof. Dr. Nicholas J. Strausfeld, University of Arizona, Tucson, AZ, U.S.A.)
08/2008Studien zur Ökologie, funktionellen Anatomie und Entwicklung von Spadella cephaloptera (Chaetognatha, im Labor von Dr. Yvan Perez, Université Aix-en-Prevence, Marseille, Frankreich)
07/2007Elektronenmikroskopische Untersuchungen am Ommatidium von Lamyctes emarginatus (Chilopoda, im Labor von Prof. Dr. A. Minelli, Universita di Padova, Italien)
10/2004Ophthalmoskopische Untersuchungen an Komplexaugen der Scutigeromorpha und Paguroidea (im Labor von Prof. Dr. Dan-Erik Nilsson, Lund University, Lund, Schweden)
10/2003 und 11/2010Elektrophysiologische Untersuchungen am Auge scutigeromorpher und lithobiomorpher Hundertfüßer (im Labor von Dr. Magnus Lindström, Helsinki University, Zoologische Station Tvärminne, Hanko, Finnland)
02/2003Spektralmikroskopische Untersuchungen am Einsiedler-Auge, biophysikalische Charakteristika von Ommatidien mit heterogenem Pigmentschild (im Labor von Prof. Dr. Doekele Stavenga, Universität Groningen, Groningen, Niederlande)
Publikationen
Originalpaper und Reviews
50.Kenning, M; Müller, CHG & Sombke A (2017). The ultimate legs of Chilopoda (Myriapoda): a review on their morphological disparity and functional variability. PeerJ 5:e4023; DOI: 10.7717/peerj.4023
49.Bleich, S; Müller, CHG; Graf, G & Hanke, W (2017). Flow generation by the corona ciliata in Chaetognatha - quantification and implications for current functional hypotheses. Zoology 125: 79-86.
48.Sentenská, L; Müller, CHG; Pekár, S & Uhl, G (2017). Neurons and a sensory organ in the pedipalps of male spiders reveal that it is not a numb structure. Scientific Reports 7:12209; DOI: 10.1038/s41598-017-12555-5
47.Gainett, G; Michalik, P; Müller, CHG; Giribet, G; Talarico, G & Willemart RH (2017). Putative thermo-/hygroreceptive tarsal sensilla on the sensory legs of an armored harvestman (Arachnida, Opiliones). Zoologischer Anzeiger 270: 81-97.
46.Gainett, G; Michalik, P; Müller, CHG; Giribet, G; Talarico, G & Willemart RH (2017). Ultrastructure of chemoreceptive tarsal sensilla in an armored harvestman and evidence of olfaction across Laniatores (Arachnida, Opiliones). Arthropod Structure & Development 46: 178-195.
45.Audo, D; Haug, JT; Haug, C; Charbonnier, S; Schweigert, G; Müller, CHG & Harzsch, S (2016). On the sighted ancestry of blindness - exceptionally preserved eyes of Mesozoic polychelidan lobsters. Zoological Letters 2:13; DOI 10.1186/s40851-016-0049-0.
44.Krieger, J; Braun, P; Rivera, NT; Schubart, CD; Müller, CHG & Harzsch, S (2015). Comparative analyses of olfactory systems in terrestrial crabs (Brachyura): Evidence for aerial olfaction? PeerJ 3:e1433; DOI 10.7717/peerj.1433
43.Guggolz, T; Henne, S; Schütz, R; Politi, Y, Maši?, A; Müller, CHG & Meißner, K (2015). Histochemical evidence of [beta]-chitin in parapodial glandular organs and tubes of Spiophanes (Annelida, Sedentaria: Spionidae), and first studies on selected Annelida. Journal of Morphology 276: 1433-1447.
42.Hilken, G; Edgecombe, GD; Müller, CHG; Sombke, A; Wirkner, C & Rosenberg, J (2015). Interaction of the tracheal tubules of Scutigera coleoptrata (Chilopoda, Notostigmophora) with glandular structures of the pericardial septum. ZooKeys 510: 233-242.
41.Rößger, A; Meißner, K; Bick, A & Müller, CHG (2015). Histological and ultrastructural reconstruction of ventral epidermal glands of Spio (Polychaeta, Spionidae, Annelida). Zoomorphology 134: 367-382.
40.Hädicke, CW; Blank, SM; Pohl, H; Müller CHG & Sombke, A (2015). Sensing the world without antennae and eyes: external structure and distribution of sensilla in Eosentomon cf. pinetorum Szeptycki, 1984 and on the protarsus of Acerentomon franzi Nosek, 1965 (Hexapoda: Protura). Soil Organisms 87: 29-49.
39.Müller, CHG; Hylleberg, J & Michalik, P (2015). Complex epidermal organs of Phascolion (Sipuncula): Insights into the evolution of bimodal secretory cells in annelids. Acta Zoologica 96: 343-374.
38.Tuchina, O; Groh, KC; Talarico, G; Müller, CHG; Wielsch, N; Hupfer, Y; Svatos, A; Große-Wilde, E & Hansson, BS (2014). Morphology and histochemistry of the aesthetasc-associated epidermal glands in terrestrial hermit crabs of the genus Coenobita (Decapoda: Paguroidea). PLOS ONE 9(5): e96430.
37.Müller, CHG; Rieger, V, Perez, Y & Harzsch, S (2014). Immunohistochemical and ultrastructural studies on ciliary sense organs of arrow worms (Chaetognatha). Zoomorphology 133:167-189.
36.Müller, CHG; Rosenberg, J & Hilken, G (2014). Ultrastructure,functional morphology and evolution of recto-canal epidermal glands in Myriapoda. Arthropod Structure & Development 43: 43-61.
35.Fischer, S; Meyer-Rochow, VB & Müller, CHG (2014). Compound eye miniaturization in Lepidoptera: a comparative morphological analysis. Acta Zoologica 95: 438-464.
34.Haug, JT; Müller, CHG & Sombke, A (2013). A centipede nymph in Baltic amber and a new approach for documenting amber fossils. Organisms Diversity & Evolution 13: 425-432.
33.Perez, Y; Rieger, V; Martin, E; Müller, CHG & Harzsch S (2013). Neurogenesis in an early protostome relative: progenitor cells in the ventral nerve centre of chaetognath hatchlings are arranged in a highly organized geometrical pattern. Journal of Experimental Zoology (Part B: Molecular and Developmental Evolution) 320: 179-193.
32.Kenning, M; Müller, CHG, Wirkner, CS & Harzsch, S (2013). The Malacostraca (Crustacea) from a neurophylogenetic perspective: new insights from brain architecture in Nebalia herbstii Leach, 1814 (Leptostraca, Phyllocarida). Zoologischer Anzeiger 252: 319-336.
31.Winkelmann, C; Gasmi, S; Gretschel, G; Müller, CHG & Perez, Y (2013). Description of Spadella valsalinae sp. nov., a neoendemic benthic chaetognath from Northern Adriatic Sea (Croatia) with remarks on its morphology, phylogeny and biogeography. Organisms Diversity & Evolution. 13: 189-202.
30.Fischer, S; Meyer-Rochow, VB & Müller, CHG (2012). Challenging limits: ultrastructure and size-related functional constraints of the compound eye of Stigmella microtheriella (Lepidoptera: Nepticulidae). Journal of Morphology 273: 1064-1078.
29.Sombke, A; Lipke, E; Kenning, M; Müller, CHG; Hansson, BS & Harzsch, S (2012). Comparative analysis of deutocerebral neuropils in Chilopoda (Myriapoda): implications for the evolution of the arthropod olfactory system and support for the Mandibulata concept. BMC Neuroscience 13:3.
28.Fischer, S; Müller, CHG & Meyer-Rochow, VB (2012). Neither apposition nor superposition: the compound eyes of the chestnut leafminer Cameraria ohridella. Zoomorphology 131: 37-55.
27.Meißner, K; Bick, A & Müller, CHG (2012). Parapodial glandular organs in Spiophanes (Polychaeta: Spionidae) - studies on their functional anatomy and ultrastructure. Journal of Morphology 273: 291-311 + suppl. material.
26.Rieger, V; Perez, Y; Müller, CHG; Lacalli, T; Hansson BS & Harzsch, S (2011). Development of the nervous system in hatchlings of Spadella cephaloptera (Chaetognatha) and implications for nervous system evolution in Bilateria. Development Growth and Differentiation 53: 740-759.
25.Fischer, S; Müller, CHG & Meyer-Rochow, VB (2011). How small can small be: The compound eye of the parasitoid wasp Trichogramma evanescens (Westwood, 1833) (Hymenoptera, Hexapoda), an insect of 0.3-0.4 mm total body size. Visual Neuroscience 28: 295-308
24.Richter, S, Loesel, R, Purschke, G, Schmidt-Rhaesa, A, Scholtz, G, Stach, T, Vogt, L, Wanninger, A, Brenneis, G, Döring, C, Faller, S, Fritsch, M, Grobe, P, Heuer, CM, Kaul, S, Møller, OS, Müller, CHG, Rieger, V, Rothe, BH, Stegner, MEJ & Harzsch, S (2010). Invertebrate neurophylogeny - suggested terms and definitions for a neuroanatomical glossary. Frontiers in Zoology 7: 29.
23.Heuer, CM; Müller, CHG; Todt, C & Loesel, R (2010). Comparative neuroanatomy suggests repeated reduction of neuroarchitectural complexity in Annelida. Frontiers in Zoology 7: 13.
22.Rieger, V.; Perez, Y.; Müller, CHG; Lipke, E; Sombke, A.; Hansson, BS & Harzsch, S (2010). Immunhistochemical analysis and 3D reconstruction of the cephalic nervous system of Chaetognatha: insights into the evolution of an early bilaterial brain. Invertebrate Biology 129: 77-104.
21.Rosenberg, J. & Müller, CHG. (2009). Morphology in Chilopoda - a survey. Soil Organisms (Suppl.) 81: 1-55.
20.Müller, CHG & Rosenberg, J (2009). Morphology is still an indispensable discipline in zoology: facts and gaps from Chilopoda. Soil Organisms 81: 387-398.
19.Müller, CHG; Rosenberg, J & Hilken, G (2009). Fine structure and phylogenetic significance of ‚flexo-canal epidermal glands' in Chilopoda. Soil Organisms 81: 269-294.
18.Harzsch, S; Müller, CHG; Rieger, V; Perez, Y; Sintoni, S; Sardet, C & Hansson, BS (2009). Fine structure of the ventral nerve centre and interspecific identification of individual neurons in the enigmatic Chaetognatha. Zoomorphology 128: 53-73.
17.Müller, CHG; Sombke, A & Rosenberg, J (2007). The fine structure of the eyes of some bristly millipedes (Penicillata, Diplopoda): additional support for the homology of mandibulate ommatidia. Arthropod Structure & Development 36: 463-476.
16.Kellner, T; Krech, M; Schulz, A & Müller, CHG (2007). The avifauna of Ibiza: an updated checklist including comments on abundances and ecology. Rostocker Meeresbiologische Beiträge 18: 7-29.
15.Fischer, S; Patzner, RA; Müller, CHG & Winkler, HM (2007). Studies on the ichthyofauna in the coastal waters of Ibiza (Balearic Islands, Spain). Rostocker Meeresbiologische Beiträge 18: 31-63.
14.Müller, CHG & Schubart, CD. (2007). Contribution to the knowledge of the Crustacea Decapoda from the Adriatic Sea: observations from four sampling locations along the Croatian coast. Rostocker Meeresbiologische Beiträge 18: 117-135.
13.Harzsch, S & Müller, CHG (2007). A new look at the ventral nerve centre of Sagitta: implications for the phylogenetic position of Chaetognatha (arrow worms) and the evolution of the bilaterian nervous system. Frontiers in Zoology 4:14 (16 p.).
12.Harzsch, S; Melzer, RR & Müller, CHG (2007). Mechanisms of eye development and evolution of the arthropod visual system: the lateral eyes of Myriapoda are not modified insect ommatidia. Organisms Diversity & Evolution 7: 20-32.
11.Sammler, S; Voigtländer, K; Stoev, P; Enghoff, H & Müller, CHG (2006). New studies on myriapods (Chilopoda, Diplopoda) from Ibiza. Norvegian Journal of Entomology 53: 291-301.
10.Harzsch, S; Melzer, RR & Müller, CHG (2006). Eye development in Myriapoda: implications for arthropod phylogeny. Norvegian Journal of Entomology 53: 187-190.
9.Meyer-Rochow, VB; Müller, CHG & Lindström, M (2006). Spectral sensitivity of the eye of Scutigera coleoptrata (Chilopoda, Scutigeromorpha). Applied Entomology and Zoology 41: 117-122.
8.Rosenberg, J; Müller, CHG & Hilken, G. (2006). Ultrastructural organization of the anal organs in the so-called ano-genital capsule of Craterostigmus tasmanianus Pocock, 1902 (Chilopoda, Craterostigmomorpha). Journal of Morphology 267: 265-272.
7.Müller, CHG & Rosenberg, J (2006). Homology of lateral ocelli in the Pleurostigmophora? New evidence from the retinal fine structure in some lithobiomorph species (Chilopoda: Lithobiidae). Norvegian Journal of Entomology 53: 165-186.
6.Müller, CHG & Meyer-Rochow, VB (2006b). Fine structural description of the lateral ocellus of Craterostigmus tasmanianus Pocock, 1902 (Chilopoda: Craterostigmomorpha) and phylogenetic considerations. Journal of Morphology 267: 850-865.
5.Müller, CHG & Meyer-Rochow, VB (2006a). Fine structural organization of the lateral ocelli in two species of Scolopendra (Chilopoda: Pleurostigmophora): an evolutionary evaluation. Zoomorphology 125: 13-26.
4.Harzsch, S; Müller, CHG & Wolf, H (2005). From variable to constant cell numbers: cellular characteristics of the arthropod nervous system argue against a sister-group relationship of Chelicerata and "Myriapoda" but favour the Mandibulata concept. Development Genes & Evolution 215: 53-68.
3.Müller, CHG; Rosenberg, J; Richter, S & Meyer-Rochow, VB (2003). The compound eye of Scutigera coleoptrata (Linnaeus, 1758) (Chilopoda: Notostigmophora): an ultrastructural reinvestigation that adds support to the Mandibulata concept. Zoomorphology 122: 191-209.
2. Müller, CHG; Rosenberg, J & Meyer-Rochow, VB (2003). Hitherto undescribed interommatidial exocrine glands in Chilopoda. African Invertebrates 44: 185-197.
1.Müller, CHG (2001). Erstnachweis der Flachkrabbe Percnon gibbesi (Crustacea: Decapoda: Grapsidae) für die Balearischen Inseln. Senckenbergiana maritima 31: 83-89.
Kurzmitteilungen, publizierte Abstracts
16. Müller, CHG; Wagenknecht, P & Sombke, A (2017). Ultrastructure and phylogenetic evaluation of the Tömösváry organ in Craterostigmus tasmanianus Pocock, 1902 (Myriapoda: Chilopoda). Tropical Natural History 5 (Suppl.): 56, ISSN: 1513-9700
15.Müller, CHG; Sombke, A; Thoen, H & Undheim, EAB (2017) Comparative morphology and evolutionary transformation of venom glands in Chilopoda. Tropical Natural History 5 (Suppl.): 42, ISSN: 1513-9700
14.Undheim, EAB; Hamilton, BR; Kurniawan, N; Bowlay, G; Brown, DL; Müller, CHG; Cribb, B; Merritt, D; Stow, JL; King, GF; Fry, BG & Venter, DJ (2014). In: Tuf, IH & Tajovský H (Eds.). Centipede venom evolution: Casting light on a neglected group of venomous animals. 16th International Congress of Myriapodology (Olomouc, Czech Republic, 20.-25.7.2014) - Book of abstracts. Palacky University Olomouc, p. 98, ISBN: 978-80-86525-28-0
13.Hilken, G; Edgecombe, GD; Müller, CHG; Sombke, A & Rosenberg, J (2014). The tracheal system of three species of Notostigmophora (Chilopoda): Notes on interaction of tracheae with epidermal glands. In: Tuf, IH & Tajovský H (Eds.). 16th International Congress of Myriapodology (Olomouc, Czech Republic, 20.-25.7.2014) - Book of abstracts. Palacky University Olomouc, p. 30, ISBN: 978-80-86525-28-0
12.Müller, CHG; Witschel, T; Hönschemeyer, T; Laue, M & Sombke, A (2014). Fine structure of trimodal beak-shaped sensilla of Scutigera coleoptrata (Chilopoda: Scutigeromorpha). In: Tuf, IH & Tajovský H (Eds.). 16th International Congress of Myriapodology (Olomouc, Czech Republic, 20.-25.7.2014) - Book of abstracts. Palacky University Olomouc, p. 62, ISBN: 978-80-86525-28-0
11.Müller, CHG & Strausfeld, NJ (2014). Searching for ancestral motion-detecting circuit of Mandibulata. In: Tuf, IH & Tajovský H (Eds.). 16th International Congress of Myriapodology (Olomouc, Czech Republic, 20.-25.7.2014) - Book of abstracts. Palacky University Olomouc, p. 61, ISBN: 978-80-86525-28-0
10. Müller, CHG; Rosenberg, J & Sombke, A (2014). The shaft organ of Scutigera coleoptrata: The long-sought hygroreceptor of scutigeromorph centipedes? In: Tuf, IH & Tajovský H (Eds.). 16th International Congress of Myriapodology (Olomouc, Czech Republic, 20.-25.7.2014) - Book of abstracts. Palacky University Olomouc, p. 60, ISBN: 978-80-86525-28-0
9.b>Müller, CHG; Hilken, G & Rosenberg, J (2014). The epidermal glands of Myriapoda: ultrastructural diversity, function and phylogenetic resolving potentials. In: Tuf, IH & Tajovský H (Eds.). 16th International Congress of Myriapodology (Olomouc, Czech Republic, 20.-25.7.2014) - Book of abstracts. Palacky University Olomouc, p. 59, ISBN: 978-80-86525-28-0
8.Rieger, V; Perez, Y; Müller, CHG; Hansson, BS & Harzsch S (2011). Development of the nervous system in hatchlings of Spadella cephaloptera (Chaetognatha). Zitteliana: an International Journal of Palaeontology and Geology (Series B) 30: 42.
7.Müller, CHG (2011). Evolutionary morphological research today and to what extent transmission electron microscopy still contributes to our understanding of phylogenetic interrelationships of invertebrates. In: Jäger, W et al. (Eds.). Proceedings of the Microscopy Conference (Kiel, 28.08.-02.09.2011), Volume 2: Life Sciences. German Society for Electron Microscopy, Kiel: L7-721, ISBN: 978-3-00-033910-3.
6.Rieger, V; Müller, CHG; Perez, Y; Hansson, B & Harzsch S (2008). Neurogenesis in the arrow worm Spadella cephaloptera (Chaetognatha). Journal of Morphology 269: 1483.
5.Müller, CHG; Rieger, V.; Perez, Y.; Hansson, N. & Harzsch, S (2008). Neurophylogeny of Chaetognatha: can neuroanatomical characters shed light on the phylogenetic position of arrow worms? Journal of Morphology 269: 1460-1461.
4.Müller, CHG; Hilken, G & Rosenberg, J (2008). Fine structure and diversity of 'flexo-canal exocrine glands' on the head of pleurostigmophoran centipedes (Chilopoda). Journal of Morphology 269: 1493 (und Peckiana 6: 88-89)
3.Müller, CHG (2008). Many ways to reach the goal - How evolutionary morphology may help to settle phylogenetic controversies about Myriapoda. Peckiana 6:6-7.
2.Müller, CHG; Rosenberg, J & Hilken, G (2006). On the fine structure of epidermal glands in Chilopoda: structure and phylogenetic aspects. Norwegian Journal of Entomology 53: 399.
1.Rosenberg, J; Müller, CHG & Hilken, G (2006). Ultrastructural organization of the anal organs in the so-called ano-genital capsule of Craterostigmus tasmanianus Pocock, 1902 (Chilopoda, Craterostigmomorpha). Norwegian Journal of Entomology 53: 397.
Buchbeiträge
22.von Byern, J; Müller, CHG; Voigtländer, K; Dorrer, V; Marchetti-Deschmann, M; Flammang, P & Mayer, G (2017). Some examples of bioadhesives for defence and predation. In: Gorb, S (Hrsg.). Functional surfaces in biology. Vol. 3. Springer, Heidelberg, New York.
21. Müller, CHG; Kenning, M; Hylleberg, J & Michalik, P (in press). Histological and electron microscopic analysis of the papillated epidermal organs of an unknown species of Phascolion (Sipuncula) from Ibiza (Spain). In: Boyle, MJ & Kawauchi, GY (Hrsg.). Proceedings of the 2nd International Symposium on the Biology of the Sipuncula. Smithsonian Institution Scholarly Press, Washington D.C., U.S.A.
20.Harzsch, S, Perez, Y & Müller, CHG (2016). The nervous system of Chaetognatha (chapter 50). In: Schmidt-Rhaesa A, Harzsch, S & Purschke, G (Hrsg.). Structure and Evolution of Invertebrate Nervous Systems: pp. 652-664. Oxford University Press, Oxford, New York.
19.Harzsch, S., Müller, CHG. & Perez, Y. (2015). The Chaetognatha. In: Wanninger, A (Hrsg.). Evolutionary Developmental Biology of Bilateria. Vol. 1. Introduction, Non-Bilateria, Acoelomorpha, Xenoturbellida, Chaetognatha: pp. 215-240. Springer, Wien.
18.Hilken, G, Sombke, A, Müller, CHG & Rosenberg, J (2015). Chapter 6. Diplopoda - Tracheal system. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda II: pp. 129-152. Brill, Leiden.
17.Müller, CHG & Sombke, A (2015). Chapter 9. Diplopoda - Sense organs. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda II: pp. 181-235. Brill, Leiden.
16.Perez, Y, Müller, CHG & Harzsch, S (2014). The Chaetognatha: an anarchistic taxon between Protostomia and Deuterostomia. In Wägele, JW & Bartolomaeus, TW & Misof, B (Hrsg.). Deep metazoan phylogeny: The backbone of the tree of life: New Insights from analyses of molecules, morphology, and theory of data analyses: pp. 49-77. Walter de Gruyter, Berlin.
15.Kapp, H, Müller, CHG & Harzsch, S (2013). Chaetognatha. In: Westheide, W & Rieger, R (Hrsg.). Spezielle Zoologie. Teil 1: Einzeller und Wirbellose Tiere (3. Auflage): pp. 812-817. Elsevier, München.
14.Müller, CHG, Sombke, A, Hilken, G & Rosenberg, J (2011). Chapter 12. Sense organs. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda. Volume 1: pp. 235-278. Brill, Leiden, 530 p. + 8 Bildtafeln.
13.Rosenberg, J, Müller, CHG & Hilken, G (2011). Chapter 10. Endocrine system. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda. Volume 1: pp. 197-215. Brill, Leiden, 530 p. + 8 Bildtafeln.
12.Rosenberg, J, Müller, CHG & Hilken, G (2011). Chapter 9. Excretory system. Nephrocytes. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda. Volume 1: pp. 188-195. Brill, Leiden, 530 p. + 8 Bildtafeln.
11.Hilken, G, Rosenberg, J & Müller, CHG (2011). Chapter 9. Excretory system. The maxillary organ of the Notostigmophora. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda. Volume 1: pp. 185-188 + 192-195. Brill, Leiden, 530 p. + 8 Bildtafeln.
10.Hilken, G, Müller, CHG, Sombke, A, Wirkner, CS & Rosenberg, J (2011). Chapter 7. Tracheal system. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda. Volume 1: pp. 137-155. Brill, Leiden, 530 p. + 8 Bildtafeln.
9.Koch, M, Müller, CHG, Hilken, G & Rosenberg, J (2011). Chapter 6. Digestive system. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda. Volume 1: pp. 121-136. Brill, Leiden, 530 p. + 8 Bildtafeln.
8.Hilken, G, Rosenberg, J & Müller, CHG (2011). Chapter 4. Integument and associated organs. Bioluminescence. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda. Volume 1: pp. 105-111. Brill, Leiden, 530 p. + 8 Bildtafeln.
7.Rosenberg, J, Müller, CHG & Hilken, G (2011). Chapter 4. Integument and associated organs. Coxal and anal organs. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda. Volume 1: pp. 98-105 + 106-111. Brill, Leiden, 530 p. + 8 Bildtafeln.
6.Rosenberg, J, Müller, CHG & Hilken, G (2011). Chapter 4. Integument and associated organs. Aggregated and compound epidermal organs. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda. Volume 1: pp. 84-97 + 106-111. Brill, Leiden, 530 p. + 8 Bildtafeln.
5.Müller, CHG, Rosenberg, J. & Hilken, G (2011). Chapter 4. Integument and associated organs. Solitary epidermal glands. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda. Volume 1: 70-84 + 106-111. Brill, Leiden, 530 p. + 8 Bildtafeln.
4.Rosenberg, J, Müller, CHG & Hilken, G (2011). Chapter 4. Integument and associated organs. Integument and cuticle. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriapoda. Volume 1: pp. 67-70. Brill, Leiden, 530 p. + 8 Bildtafeln.
3.Hilken, G, Minelli, A, Müller, CHG, Rosenberg, J, Sombke, A & Wirkner, CS (2011). Chapter 2. The introduction. History of research. In: Minelli, A (Hrsg.). Treatise on Zoology - Anatomy, Taxonomy, Biology - The Myriaoda. Volume 1: pp. 22-42. Brill, Leiden, 530 p. + 8 Bildtafeln.
2. Müller, CHG (2008). Vergleichend-ultrastrukturelle Untersuchungen an Augen ausgewählter Hundertfüßer (Mandibulata: Chilopoda) und zur Bedeutung von Augenmerkmalen für die phylogenetische Rekonstruktion der Euarthropoda. Doktorarbeit, Naturwissenschaftliche Fakultät der Universität Rostock, 138 p. + 140 p im Anhang, Cuvillier Verlag, Göttingen, ISBN 978-3-86727-484-5.
1.Müller, CHG (2007). Ibizas Meereswelt - Struktur und Wandel aus der Sicht eines Biologen. In: Schwetje, W. (Hrsg.). Goodbye Tanit. Ibiza - Zwischen Traum und Trauma: pp. 303-311, Palmyra Verlag, Heidelberg.
Buchkritiken
1.Schubart, CD & Müller, CHG (2006). Crustacea and arthropod relationships (Koenemann, S & Jenner, RA (Ed.), 2005, CRC Press, Boca Raton, 423 pp., ISBN 0-8493-3498-5). Systematic Biology 55: 693-696.
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Aktuelle Forschungsprojekte

1) Vergleichende Ultrastruktur von tip-pore Sensillen bei Hundertfüßern und Spinnen

Bei Hexapoden sind wandporen-durchsetzte Haarsensillen (u.a. Sensilla basiconica) wichtige und gut untersuchte Instrumente des Riechsinns. Außerhalb der Hexapoda sind diese vielporigen Sensillen dagegen selten (Hundertfüßer) oder fehlen gänzlich (Spinnen). Dennoch weisen biochemische, ethologische und/oder elektrophysiologische Daten darauf hin, dass Vertreter beider Arthropodengruppen in der Lage sind olfaktorische Stimuli wahrzunehmen. In diesem Zusammenhang sind solche Sensillen verdächtig, die über eine terminale Pore und eine besonders beschaffene, aber nicht durch perforierte Schaftcuticula besitzen. Beispiele für solche olfaktorischen Sensillen werden sowohl auf den Antennen,  Laufbeinen und Terminalbeinen des Spinnenläufers Scutigera coleoptrata, als auch auf den distalen Podomeren der Laufbeine der Wespenspinne (Argiope spp.) mithilfe der TEM untersucht. Neben der Beantwortung evolutionsmorphologischer Fragestellungen geht es uns auch um die Aufklärung alternativer Mechanismen des Odoranten-Zugangs zum Sensillen-Liquor und den darin befindlichen Rezeptoren.

 

Kooperationspartner:

Anne-Sarah Ganske (Naturhistorisches Museum Wien, Zoologische Abteilung, Wien, Österreich)

Dr. Andy Sombke (Universität Greifswald, Abtg. Cytologie & Evolutionsbiologie)

 

2) Sensorische Ausstattung distaler Tasteranteile von Spinnen

Bis vor kurzem galten die während der Kopulation als Spermienüberträger genutzten Bulbi als nicht-sensitive Projektionen des männlichen Tasters. Diese Grundannahme lässt sich nach jüngsten transmissionselektronenmikroskopischen (TEM) Analysen allerdings nicht mehr aufrecht erhalten, da an der Basis des Embolus einiger Spinnenarten (u.a. kleine oder große Aggregate von versenkten Sensillen gefunden wurden (Sentenska et al. 2017, Scientific Reports 7: 12209). Ultrastrukturell ähneln diese Sensillen den Tarsalorganen, die in den Tarsengliedern der Laufbeine diverser Spinnen dokumentiert wurden. Der Fund geht einher mit dem Nachweis eines bislang unbekannten Bulbusnervs. Dieser Nerv enthält sowohl Afferenzen des versenkten Sensillen-Clusters, als auch drei distinkte, efferente Neuritenbündel, die u.a. embolus-assoziierte Drüsenepithelien innervieren. Aktuelle TEM-Analysen zielen darauf ab, die Porenöffnungen der versenkten Sensillen auf dem Embolus zu lokalisieren. Rasterelektronenmikroskopische (REM) Beobachtungen weisen in diesem Zusammenhang auf eine Reihe hügelartiger Protuberanzen im distalen Drittel des Embolus hin. Die spezielle Ultrastruktur der Dendritenspitzen (z.B. Existenz eines Tubularkörpers als Indiz für Mechanorezeption) kann Hinweise liefern, ob es sich bei diesen Sensillen um Chemo- oder Stellrezeptoren handelt.

 

Kooperationspartner:

Dr. Lenka Sentenská (Masaryk University, Dept. of Botany and Zoology, Brno, Tschechien)

                     

3) Einsatzpotentiale der Biowave für eine optimale chemische Fixierung heikler Arthropodengewebe für die TEM

Als beste aller möglichen Methoden für die Konservierung des Cytosols gilt die Cryofixierung, die besonders in der funktionellen Ultrastrukturforschung vielfach mit Erfolg eingesetzt wird. Allerdings sinkt die Effizienz der Cryofizierung mit der Zunahme der Größe bzw. des Durchmessers zu fixierender Gewebe bzw. Körperteile. Auch die glutardialdehyd-basierte Chemofixierung birgt Risiken, da in oder auf den Geweben befindliche Diffusionsbarrieren den Importerfolg des Glutardialdehyds herabsetzen. Dies ist insbesondere bei den Arthropoden ein Problem, welche von einer stark skleroritisierten, ggf. verkalkten Cuticula gepanzert sind. Werden epidermale Sinnes- oder Drüsenorgane mit intracuticulären Anteilen untersucht, dann sind zusätzlich die Möglichkeiten der Präparation eingeschränkt, da die strukturelle Integrität der Zielorgane geschädigt werden kann. Ein klassisches Beispiel für solcherart heikle Untersuchungsobjekte sind die Cheliceren, Palpen oder die Laufbein-Podomere von Spinnen. Der Erfolg einer Chemofixierung kann durch den Einsatz von Mikrowellenstrahlung gesteigert werden. Allerdings ist diese Kombinationsmethode noch nicht feinmorphologische Studien an Spinnen etabliert. Daher wird hier unter Mitwirkung einer technischen Assistentin des Imaging-Zentrums der Fachrichtung Biologie (Leitung: Frau Dr. Rabea Schlüter) eine vergleichende TEM-Studie durchgeführt, in der die Chemofixierungsqualitäten von Beingeweben (Epidermis, Sinnesorgane, Muskulatur) mit und ohne Einsatz einer PELCO BioWave Pro getestet wird. Untersucht werden hierbei distale Laufbeinpodomere der Wespenspinne Argiope blanda. Ziel ist unter anderem die Erstellung eines robusten Präparations- und Fixierungsprotokolls, welches zumindest auch für Vertreter weiterer Teiltaxa der Arachnida angewandt werden kann

 

4) Vergleichende Ultrastruktur und Evolution von Giftdrüsen bei Hundertfüßern (Chilopoda)

Der Besitz von 1 Paar postcephaler Giftklauen (Maxillipeden) wird als Apomorphie der Hundertfüßer gedeutet. Obwohl es eine recht genaue Vorstellung von der Disparität und evolutionären Transformation der Maxillipeden innerhalb dieser Tiergruppe gibt, fehlt bis heute ein invasiv-morphologisches Korrelat bezüglich der in den Maxillipeden befindlichen Giftdrüsen. Gemeinsam mit Kollegen der Universität Greifswald und University of Queensland (Brisbane, Australien), rekonstruiere ich den modularen Aufbau der Giftdrüsen am Beispiel ausgesuchter Vertreter aus allen fünf Untergruppen der Hundertfüßer. Dabei kommt ein breites Spektrum invasiv- und non-invasiv-morphologischer Analysemethoden zum Einsatz (µ-CT, TEM, Immunhistochemie, Semidünnschnitt-Histologie, parafinschnitt-basierte Spektroskopie). Flankierende transkriptomische und proteomische Analysen sollen Aufschluss über die chemische Zusammensetzung der taxonspezifisch produzierten Gifte liefern.

Für weitere Details zum Projekt und beteiligten Kooperationspartnern siehe auch folgenden Link.

 

5) Strukturelle Diversität und Evolution der Terminalbeine der Hundertfüßer (Chilopoda)

Gegliederte Beine (Arthropodien) sind eine evolutionäre Neuheit (Apomorphie) der Gliederfüßer (Arthropoda). Vielfache Abänderungen von ursprünglich wahrscheinlich zweiästigen Schwimmbeinen führten zur Ausprägung unterschiedlichster Formen von gegliederten Extremitäten, darunter sensorischer Anhänge wie Antennen und Cerci, Raub-, Wehr- und Filterbeine oder Greiforgane. Mehrfach unabhängig voneinander wurden einästige Laufbeine (Stenopodien) evolviert. Während gerade die Antennen der Krebse, Myriapoden und Hexapoden recht gut untersucht sind, ist die Wissensdichte gerade bezüglich der sensorischen Ausstattung der Lauf- und hinteren Rumpfbeine bei vielen Arthropodengruppen vergleichsweise dünn. Besonders wenig ist bislang über die Terminalbeine der Hundertfüßer (Chilopoda) bekannt geworden, obwohl gerade diese meist deutlich verlängerten oder verdickten Beine einen hohen Grad struktureller und funktioneller Diversifizierung aufweisen. Im Rahmen eines DFG-Projekts (SO1289/1) werden derzeit verschiedene strukturelle Spezialisierungen multimodalmikroskopisch dokumentiert (cLSM (Immunhistochemie, REM, TEM, Semidünnschnitt-Histologie). Dabei liegt ein Analyseschwerpunkt auf den antennen-ähnlichen, multitarsalen Terminalbeinen der Spinnenläufer (Scutigeromorpha) und Vertretern der Skolopender-Gattung Newportia (Scolopendromorpha). Ultrastruktur-basierte Typencharakterisierungen der Terminalbeinsensillen werden durch Visualisierungen der assoziierten neuronalen Pfade und elektrophysiologische Ableitungen von Einzelsensillen ergänzt. Ein Vergleich mit Komplementärdaten von der Antenne soll Aufschluss darüber geben, ob und inwiefern ähnlich geformte und funktionsspezialisierte Anhänge auch Ähnlichkeiten bezüglich ihrer  sensorischen Ausstattung und Innervationsmuster zeigen.

Für weitere Details zum Projekt und beteiligten Kooperationspartnern siehe auch folgenden Link.        

Abgeschlossene Projekte (Auswahl)

1) Neuro- und Sensophylogenie der Pfeilwürmer (Chaetognatha)

Dokumentation und feinstrukturelle Rekonstruktion ciliärer Sinnesorgane (Corona ciliata, ciliary fence and tuft organs, Augen); cilien-induzierte Strömungsmuster über der Corona ciliata; Feinbau ventraler Drüsenpapillen bei Spadellidae; (Immun-)Histochemische Charakterisierung des Peripheren und Zentralen Nervensystems ausgewählter Sagittidae und Spadellidae; Neubeschreibung der Art Spadella valsalinae aus der Nördlichen Adria, Biogeographie europäischer Spadellidae.

 

Kooperationspartner:

Prof. Dr. Steffen Harzsch (Universität Greifswald, Cytologie & Evolutionsbiologie)

Dr. Yvan Perez (Aix-Marseille Université, Marseille)

 

2) Feinstrukturelle Rekonstruktion und Evolution von Epidermalorganen bei Spritzwürmern (Sipuncula, Annelida)

Beschreibung der sensorischen und drüsigen Komponenten in glatten und papillären Epidermalorganen, sowie Holdfast-Papillen bei Phascolion cf. strombus; Konzeptionalisierung von Epidermalorganen als neuen Merkmalskomplex für die Rekonstruktion der internen und externen Phylogenie der Sipuncula (u.a. bimodale Sekretzellen).

 

Kooperationpartner:

PD Dr. Peter Michalik (Universität Greifswald, Zoologisches Museum)

Prof. Dr. Jørgen Hylleberg (Aarhus Universitet, Institute for Bioscience)

 

3) Evolutions- und Funktionsmorphologie von solitären und aggregierten Hautdrüsen bei Myriapoden

Vergleichende Feinstruktur von soliären Kopfdrüsen bei Scutigeromorpha, Lithobiomorpha, Craterostigmomorpha, Scolopendromorpha und Geophilomorpha; Verbreitung, Funktion und Evolution von Flexocanal- und Rektocanaldrüsen; räumliche und funktionelle Kopplung von Hautdrüsen mit einzelnen Sensillen oder komplexen ciliären Sinnesorganen.

 

Kooperationspartner:

Dr. Jörg Rosenberg (Am Kützelbach 3, D-59494 Soest)

Prof. Dr. Gero Hilken (Universität Duisburg-Essen, Universitätsklinikum Essen, Zentrales Tierlaboratorium)

 

4) Feinstrukturelle Organisation, Funktion und Evolution ciliärer Sinnesorgane bei Hundertfüßern (Chilopoda) und Doppelfüßern (Diplopoda)


Feinbau des Schaftorgans und benachbarter Stiftsensillen auf dem 2. Antennengrundglied von Scutigera coleoptrata (Chilopoda); Disparität von trimodalen Sensillen (Kombination von Mechanorezeption, Olfaktion, Gustation) auf den Antennen von Scutigera coleoptrata, fixierungsbedingte Strukturvariationen von Sensillenkomponenten (Chemo- vs. Hochdruck-Kryofixierung), AMIRA-gestützte Rekonstruktion der Trimodalsensillen auf der Basis von ssTEM und serieller Blockphotographie; Feinbau und Evolution von Tömösváryschen Organen bei Phryssonotus platycephalus (Penicillata, Diplopoda) und Craterostigmus tasmanianus (Craterostigmomorpha, Chilopoda).

 

Kooperationspartner:

Dr. Andy Sombke (Universität Greifswald, Abtg. Cytologie &Evolutionsbiologie)

Dr. Jörg Rosenberg (Am Kützelbach 3, D-59494 Soest)

Prof. Dr. Gero Hilken (Universität Duisburg-Essen, Universitätsklinikum Essen, Zentrales Tierlaboratorium)

Dr. Michael Laue, (Robert-Koch-Institut, Berlin)

Dr. habil. Thomas Hörnschemeyer (Senckenberg Gesellschaft für Naturforschung, Scientific IT, DMZ, Biodiversity Informatics)

 

5) Morphologie und Evolution der Lichtsinnesorgane von Brachiopoden

Ultrastruktur der ciliären Photorezeptoren bei Joania cordata und Argyroteca cuneata; Bedeutung von Brachiopoden-Augenstrukturen für das Verständnis der Augenevolution innerhalb der Bilateria, DFG-Projekt: Lu839/5.

 

Kooperationspartner:             

PD Dr. Carsten Lüter (Museum für Naturkunde Berlin, Leibniz-Institut für Evolutions- und Biodiversitätsforschung)